140
ise fayans ya da kalebodur olmalı, geçici üretim laboratuvarları ise kireç ile badana
edilmesi gerekir. (mantarların ürememesi için). Laboratuvarların sıcaklıkları 19-
22ºC arasında, ortalama neminde % 70-75 arasında olmalıdır.
Üretimde kullanılacak R. grandis erginleri iki yılda bir ormandan toplanmalı ve
4-4,5-5 mm boyunda olanları üretimde kullanılmalıdır. Bu boyda olanlar en iyi
sonuçların alınması için idealdir, kumda erginleĢme oranları %100‟e kadar
çıkmaktadır. 2,8-3,5 mm boyunda olan erginlerden düĢük oranda verim
alınmaktadır. Üretimde kullanılacak erginlerin yaralı ve sakat olanları ayıklanmalıdır.
Yeterince verimli olmayan bireylerden oluĢan R. grandis topluluklarında, bazı
yetersizlikler kalıtsal olarak kuĢaktan kuĢağa geçmektedir. Bu da D. micans ile
biyolojik mücadelede iyi bir verimin alınmasını engellemektedir. R. grandis erginleri
belli elemelerden geçirildikten sonra sağlıklı olanlar üretimde kullanılmalıdır.
Beslenme kapları 7,5 x 5 cm ebadındaki cam kaplar içine larva öğüntüsü veya ladin
kabuğu talaĢı, 1x1,2x2,2x3 cm ebadında yaĢ ladin kabuğu ve D. micans‟ın larvaları,
pupaları veya yumurtaları konulur. Hazırlanan bu beslenme kaplarına üretilen R.
grandis‟in ergin ve larvaları ayrı kaplara 1000–4000 adet konularak laboratuvarda
4–5 günlük olgunluk yiyimi yaptırılır. Bu süre sonunda beslenme kapları +4ºC‟ye
ayarlanmıĢ buzdolabına konulur.
Rhizophagus grandis‟in laboratuar Ģartlarında üretilmesinde kutu, tüp,
larvadan ve erginden olmak üzere 4 üretim metodu uygulanmıĢtır.
Larvadan (kütükte) üretim yöntemi
Ladin kütüklerine D. micans larvaları verilmek suretiyle yapılan üretim
metodu; laboratuvarda üretim için kullanılacak kütükler, genellikle sıklık bakımı
yapılan sahalardan kesilen ağaçların, tümünü kullanmak için ağacın dip kısmından
ucuna doğru 35–40 cm boyunda ve 18-30 cm çapında suyunu kaybetmemiĢ yaĢ
ladin kütükleri alınır. Ağacın ucuna yakın olan kısmı D. micans‟ın larvadan
üretilmesine müsait olmadığı için, D. micans’ın erginden üretilmesinde kullanmak
için 40-60cm boyunda kütükler alınarak ağacın tümü değerlendirilir. Uygun
seksiyonlara ayrılan ladin kütükleri iyice temizlendikten sonra, kütüğün bir tarafı ile
kabuktaki yaralı ve çatlak kısımlar bir fırça yardımı ile sıvı parafinle kapatılır. Bu
iĢlem kütüğün kısa sürede nem kaybetmesini önlemek için yapılmaktadır.
141
ġekil 19. Üretim kütüklerinin hazırlanması
Hazırlanan bu kütüklerin parafinli olan kısmı bir keski ve çekiç yardımıyla
kambiyum ile odun arasında 1-3 cm derinlikte ve 1-2 cm geniĢlikte kambiyum
sağlam kalacak Ģekilde, kütüğün her iki tarafından odun kısmından ayrılacak Ģekilde
kanal açılarak, leğen içindeki önceden sterilize edilmiĢ nemli kuma, kütüğün
parafinli olmayan kısmı 2-3 cm gömülmek suretiyle yerleĢtirilir.
ġekil 20. Üretim kütüklerinde kanal açılması ve üst yüzeylerinin parafinlenmesi
Leğen içindeki kum 5-8 cm yükseklikte olmalı, ormandan toplanan D.
micans‟ın 2-3‟üncü gömlekteki larvalarından ölmüĢ ve hastalıklı olanlar ile son
gömlekteki larvaları bir pens ve fırça yardımı ile ayıklanarak, kütüğün çapına göre
açılan kanallara 400 ile 1000 adet olmak üzere her iki tarafa verilirler.
ġekil 21. D. micans larvalarını üretim kütüklerine verilmesi.
142
Kütüğe verilen larvalar 3-7 gün içinde kambiyumu yiyerek kütüğe yerleĢirler. Bu
süre sonunda, kütüğe konan D. micans‟ın larva sayısına göre, R. grandis erginleri 1
çift, 2 çift (2 diĢi 2 erkek), 2 diĢi 1 erkek hesabı ile çalıĢmanın fazla olduğu yerlere
kabuk üçgen Ģeklinde yandan açılarak verilir. Açılan kısım reçine veya yarı katı
parafin ile kapatılır ya da kütüğün üstünde açılan kanaldaki çalıĢmanın bol olduğu
(D. micans larvalarının beslenme yaparken dıĢarı attıkları ladin talaĢı) yerlere
verilirler. Yırtıcı verme iĢi bittikten sonra kütüğün üstten açılan kısmı nem kaybını
önlemek için üzeri yarı katı parafınla kapatılır.
ġekil 22. Üretim kütükleri için parafin hazırlanması ve kanalların kapatılması.
R. grandis erginleri kütükte bir hafta içinde çiftleĢerek yumurta koyarlar. Bir
haftanın sonunda yumurtadan çıkan R. grandis larvaları kütükte, 22–30 gün
boyunca D. micans larvaları ile son gömleğe kadar beslenirler. R. grandis
erginlerinin kütüğe verildikten 22‟inci günden sonra olgunlaĢan larvalar pupa
safhasına yatmak için kütüğün altındaki nemli kuma inmeye baĢlarlar. Kuma inen
son gömlek larvalar, kütüğün altına doğru ilerleyerek, ya kütüğün altında ya da
kuma 2-3 cm girerek kendilerine kumda bir pupa beĢiği hazırlayarak, pupa
safhasına yatarlar. Kumda pupa safhasına yatan larvalar, 7-10 günlük dinlenme
döneminden sonra pupa safhasına geçerler, 10-15 günlük bir pupa safhasından
sonra genç ergin safhasına gelirler. Bu süre boyunca kum sürekli kontrol edilerek
haftada iki kez pompa yardımı ile hafif bir Ģekilde nemlendirilir. Kumun fazla nemli
olması Beauveria bassiana adlı mantarın kolayca üremesine ve kumun tümüne
yayılmasına neden olur. Kumu normal nemli düzeyde tutmak gerekir, zira
böceklerin en fazla zayiat verdikleri ve savunmasız oldukları devre pupa safhasıdır.
Eğer üretim kütüklerinin birinde veya bir kaçında B. bassiana adlı mantarın üremesi
tespit edilirse, bu kütükler laboratuvardan uzaklaĢtırılır, aksi halde mantar tüm
143
laboratuvara yayılır. Kum nemlendirilmezse böcek pupa safhasında nemsiz ortamda
su kaybeder ve sonunda ölür.
ġekil 23. Kütüklere R. grandis verilmesi ve numaralandırılası
Kütüklerin yerleĢtirildiği kumun nemlendirilmesi
Olgun larvalar kuma indikten sonra 45‟inci günden itibaren ilk genç erginler
görünmeye baĢlar. ErginleĢen R. grandis erginleri 65‟inci günden sonra, kumdan
kalifiye iĢçiler tarafından seçilirler.
ġekil 27. R. grandis erginlerinin, pupa ve larvalarının kumdan seçilmesi
144
Kumdan seçme iĢlemi sırasında larvalar, erginler ve pupalar ayrı ayrı kaplara
alınırlar, erginler ve larvalar beslenme kaplarına alınarak 4–5 gün boyunca
laboratuvarda olgunluk ve cinsel güce eriĢmeleri için beslenmeleri sağlanır.
ġekil 28. Üretim kütüklerinden elde edilen R. grandis ergin, pupa ve larvaları
R. grandis erginleri ve larvaları bu süre sonunda ormana verilene kadar
beslenme kapları ile birlikte +4ºC‟de latent halde saklamak için buzdolabına
konulur, ormana verilecek erginler ve larvalar taĢıma kapları (Buzluklar) ile böcekli
sahalara götürülerek D. micans‟in yuvalarına verilirler.
ġekil 29. Üretilen R. grandis bireylerinin D. micans yuvalarına verilmesi.
TaĢıma esnasında yırtıcı böceğin hava Ģartlarından etkilenmemesi için,
buzlukların içine naylon torba ile buz parçaları konulmasına dikkat edilmelidir,
kaptaki sıcaklığın dıĢ ortamın etkisiyle artması sonucu tüm yırtıcılar toplu halde
ölürler. Pupalar ise 10x20, 5x10 cm ebadında içinde hafif nemli kum bulunan cam
veya plastik kaplara konularak laboratuvarda erginleĢmeleri sağlanır. Üretim
kütüklerinin kabukları bıçak yardımı ile soyularak, kütükte kalan erginler, larvalar
ve pupalar seçilerek beslenme kaplarına alınırlar.
7.3. Kabuk Böceklerinin Biyolojik Mücadelesinde
Thanasimus formicarius (L.) (Coleoptera: Cleridae) Kullanılması
Thanasimus formicarius (L.) (Coleoptera: Cleridae) kabuk böceklerinin en yaygın ve
en iyi bilinen predatörlerinden biridir (1). Thanasimus formicarius çam, ladin,
melez, duglas vb.i koniferlerde ve meĢe, dıĢbudak, kavak vb. yapraklı ağaçlarda
zarar yapan 15 cinsten (Dendroctonus, Dryocoetes, Hylastes, Hylesinus, Hylurgops,
145
Hylurgus, Ips, Leperesinus, Orthotomicus, Pityogenes, Pityokteines, Polygraphus,
Scolytus, Tomicus and Trypodendron) 27 kabuk böceği türünden beslenmektedir
(2,5,10). T. formicarius erginleri 4-10 ay yaĢar (2) ve kabuk böceklerinin
feromonlarına (345) ve konukçu bitki uçucularına karĢılık verir (6). Erginleri, kabuk
böceği saldırısı altındaki ağaçlara konar, kabuk böceği erginleri ile beslenir ve
yumurtalarını kabuk üzerine koyar. Yumurtadan çıkan larvaları kabuk böceği
galerilerine girer ve kabuk böceklerinin yumurta, larva ve puaları ile beslenir.
Olgun larvaları dıĢ kabukta uygun yerlerde pupa olur. T. formicarius‟un ladin kabuk
böceği, Ips typographus‟un feromonlarına karĢılık verdiği bilinmektedir (3). Bununla
birlikte, Belçika‟da ladin meĢcerelerinde Ips typographus ile iliĢkisi çok zayıf
bulunmuĢtur ve Ips typographus feromonu destekli tuzaklarda nadir olarak
yakalanmıĢtır (789). Daha da önemlisi, T. formicarius çamlarda daha büyük
mikarlarda yakalanmıĢtır. GeçmiĢ deneyimer, T. formicarius‟un ladinde pupa olması
için kabuk kalınlığının önemli bir sınırlandırıcı etken olduğunu göstermektedir.
146
Thanasimus formicarius (L.) (Coleoptera: Cleridae) ülkemizde Ips
sexdentatus, Ips typographus, Pityokteines curvidens gibi kabuk böceklerinin
biyoljik mücadelesi için laboratuarda üretilerek ormanlara salıverilmektedir.
Bu amaçla, bu kbuk böceği türlerinin zarar yaptığı ormanlara asılmıĢ olan
feromon tuzaklarından sağlanan Thanasimus formicarius (L.) (Coleoptera:
Cleridae) erginleri laboratuarda plastik kaplara alınarak kabuk öğüntüsü
içinde kabuk böceği erginleri ie beslenir. Beslenme kaplarında çiftleĢmeleri
sağlanır. Yumurta koyan erginler 9-10 gün sonra kutulardan alınır ve orman
alanlarına salınır. Kutularda yumurtadan çıkan T. formicarius larvaları, içinde
taze öğüntü bulunan cam tüplere her bir tüpte sadece bir adet olacak Ģekilde
yerleĢtirilir ve yanına av olarak bir kabuk böceği larvası konur.
Her bir cam tüpteki T. formicarius larvası, her gün bir adet kabuk böceği
larvası ile 56-65 gün beslenir. Son larva evresine giren T. formicarius
larvaları özel soğutulmuĢ böcek aĢıma kapları ile orman alanlarına taĢınarak
ağaç gövdeleri üzerine bırakılabilir.
Eğer T. formicarius larvaları ergin hale geldikten sonra araziye taĢınması
istendiğinde olgun larvaların pupa ve erginleĢmesi sağlandıktan sonra yine
taĢıma kapları ile araziye götürülerek ağaçların dibine salıverilir.
Feromon tuzağı topama kapında canlı
T. formicarius erginleri
147
Doğu Karadeniz Ladin Ormanlarında kitle üremesi yapan Ips typographus, bugün
tüm ladin ormanlarımıza yayılarak doğal yayılıĢ alanını tamamlayıp, kitle üremesi
yaptığı sahalarda Picea orientalis‟lerin geleceğini tehlike altına sokmuĢtur.
Avrupa‟da olduğu gibi, bizde de en tehlikeli ladin kabuk böceği türüdür. Bu böceğe
karĢı biyoteknik ve mekanik mücadele çalıĢmalarının yanı sıra biyolojik mücadelede
kullanılacak türlerin araĢtırılarak laboratuvar Ģartlarında üretilmesi gerekmektedir.
Bu böceğin ergin, yumurta, larva ve pupalarını yiyerek beslenen Thanasimus
formicarius‟un laboratuar Ģartlarında üretilmesi için üç metot uygulanmıĢtır. Birinci
metotta ormandan getirilen 22cm çapında ve 45cm boyundaki yaĢ ladin
takozlarına Ips typographus erginleri verilerek kafeslere konulmuĢtur. Yapılan
üretimde her kütükten ortalama 14 adet T.formicarius ergini elde edilmiĢtir. Bu
metod kafes içinde gerçekleĢtiği için oldukça zor ve ekonomik bulunmamıĢtır.
Kütüklere Dendroctonus micans‟in ergin ve larvalarının verilerek yapılan
üretim Ģeklinde ise, kutu metodu ile üretilen T. formicarius larvaları bu kütüklere
larva safhasında verilerek yapılan üretimden, her kütükten ortalama 13 adet ergin
elde edilmiĢtir. En ekonomik üretim Ģekli ise kutu ve tüpte yapılan üretim Ģekli
olarak tespit edilmiĢtir. Kutu metodu ile üretilen larvalar, her tüpe bir adet T.
formicarius larvası verilerek son gömleğe gelinceye kadar D. micans larvası ile
beslenip, son gömlek larvalar viĢne çürüğü veya eflatun rengine geldiklerinde
tüplerden çıkarılarak içinde hafif nemlendirilmiĢ ladin talaĢı ve yaĢ ladin kabuğu
bulunan kaplara konularak erginleĢmeleri sağlanmıĢtır.
148
Kaynaklar
Berliner, E. 1911. Uber de schlaffsucht der Mehlmottenraupe. Zeitschrift fur das
Gesamstadt 252: 3160-3162.
Kirchmair, M., Neuhauser, S., Strasser, H., Voloshchuk, N., Hoffmann, M. and
Huber, L. (2009). Biological Control of Grape Phylloxera – A Historical Review and
Future Prospects. Acta Horticulturae 816, 13-18.
Schomburgk, R. H. 1848. The history of Barbados. Longman, Brown, Green and
Longmans, London, England, 722.
Bobb ML, Weidhaas JA, Ponton LF. 1973. White peach scale: life History and control
studies. Journal of Economic Entomology 66: 1290-1292.
149
Angus, T. A. 1956. Association of toxicity with proteincrystalline inclusions of
Bacillus sotto Ishiwata. Can. J.
Microbiol. 2: 122-131.
Lambert, B. and M. Peferoen. 1992. Insecticidal promise of Bacillus thuringiensis.
Facts and mysteries about a successful biopesticide. BioScience 42: 112-122.
Steinhaus, E. A. 1951. Possible use of B. t. berliner as an aid in the control of alfalfa
caterpillar. Hilgardia 20: 359-381.
Predatör Böcek Grupları
Coleoptera
Dermaptera
Diptera
Hemiptera
Hymenoptera
Mantodea
Neuroptera
Orthoptera
Thysanoptera
Coleoptera
Carabidae
Calosoma, Galerita, Harpalus, Lebia, Pterostichus.
Cicindelidae
Cincidela
Staphylinidae
Creophilus, Lathrobium, Oligota, Sepedophilus.
Lampyridae
Photuris, Photinus, Lecontea.
Cantharidae
Coccinellidae
Rodolia, Olla, Chilocorus, Scymnus, Coleomegilla, Hippodamia, Eriophis,
Hyperaspis, Coccinella, Cycloneda, Adalia.
150
Dermaptera
Forficulidae
Forficula, Doru.
Labiduridae
Labidura.
Labiidae
Labia, Marava.
Diptera
Cecidomyiidae
Aphidoletes, Tripsobremia.
Asilidae
Laphria, Efferia, Psilonyx.
Dolichopodidae
Melanderia, Dolichopus.
Syrphidae
Syrphus, Allograpta.
Hemiptera
Miridae
Tytthus.
Nabidae
Nabis, Tropiconabis.
Anthocoridae
Orius.
Reduviidae
Arilus, Sinea, Zelus.
Phymatidae
Phymata.
Lygaeidae
Geocoris.
Pentatomidae
Alcaeorrhynchus, Podisus, Sitretrus.
Hymenoptera
Sphecidae
151
Chlorion, Ammophila, Sphex, Pemphedron, Crossocerus, Philantus.
Vespidae
Vespula, Polistes, Polybia.
Eumenidae
Eumenes.
Formicidae
Mantodea
Mantidae
Tenodera, Mantis
Neuroptera
Chrysopidae
Chrysopa, Chrysoperla.
Hemerobiidae
Hemerobius
Mantispidae
Mantispa.
Coniopterygidae
Myrmeliontidae
Orthoptera
Gryllidae
Oecanthus.
Thysanoptera
Phlaeothripidae
Leptothrips, Aleurodothrips.
Aelothripidae Aeolothrips.
PARAZİTOİDLER
152
PARASITE - "an organism living in or on another living organism, obtaining from it part or all
of its organic nutriment, commonly exhibiting some kind of adaptive structural modification, and
causing some degree of real damage to its host." (Webster's International Dictionary)
Internal
External
i.
Attached
ii.
Temporary
PARASITOID - develops on or in its host (usually an insect) and kills it before or upon
completing its development
SUPERPARASITISM - several parasitoids compete for same host
HYPERPARASITISM - parasitoid uses another parasitoid as its host
Anoplura
Mallophaga
Siphonaptera
Diptera
i.
Culicidae (adults)
ii.
Simulidae (adults)
iii.
Tabanidae (adults)
iv.
Ceratopogonidae (adults)
PARASITOID GROUPS
Diptera
i.
Tachinidae
Strepsiptera
Hymenoptera
i.
Ichneumonidae
ii.
Braconidae
iii.
and numerous other families of wasps
Dostları ilə paylaş: |